雞馬立克病毒（MDV）核酸擴增檢測試劑盒

【產品名稱】

通用名稱：雞馬立克病毒（MDV）核酸擴增檢測試劑盒

Name ：Marek's Disease Virus Detection Kit（Real-Time PCR Method）

【包裝規(guī)格】48T/盒

【預期用途】

雞馬立克氏病是由雞馬立克氏病病毒引起的一種雞的惡性淋巴腫瘤性疾病，屬于α皰疹病毒屬，具有高度的接觸傳染性。ＭＤ以淋巴細胞組織增生，在各內臟器官以及外周神經、肌肉、皮膚、性腺、虹膜中產生單核細胞浸潤和腫瘤為特征[1-2]。ＭＤ 在世界各地廣泛流行，對養(yǎng)禽業(yè)造成巨大的經濟損失。同時該病也是目前唯yi可以用疫苗來預防的腫瘤性疾病。本試劑盒利用實時熒光 PCR 原理，檢測馬立克氏病病毒， 對雞馬立克氏病的診斷有重要指導意義。

【檢驗原理】

本試劑盒針對馬立克病毒基因高度保守區(qū)域設計特異性引物和探針，在反應體系   中含馬立克病毒基因組模板的情況下，PCR 反應得以進行并釋放熒光信號。利用儀器對 PCR 過程中相應通道的信號強度進行實時監(jiān)測和輸出，實現(xiàn)檢測結果的定性、定量分析。

【試劑組成】

注：

1）  不同批號試劑不能混用。

2）  試劑盒內各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標示的檢測次數(shù)。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次，有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

剪取腫瘤組織、病變淋巴結組織。

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸，嚴禁反復凍融。

【使用方法】

1.  樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1  樣本前處理

組織樣品：每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術/剪剪碎混勻后取0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 50μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；

1.2  DNA 提取

1） 對上述處理好的標本加入 50μL 核酸提取液，100℃恒溫處理 10min，13,000 rpm 離心 5min，取上清液轉移至新的 1.5mL EP 管，-20℃保存；

2）DNA 的提取也可以采用公司生產的 DNA/提取試劑盒（離心柱提取法），請按照試劑盒說明書進行操作。

2.  試劑配制（試劑準備區(qū)）

根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照；樣品每滿 7 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：

將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中，21uL/管。

3.  加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的 DNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4.  PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）

4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內；

4.2 設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25μL；

熒光通道選擇： 檢測通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye） NONE，ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光，選擇 None 即可。

4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設置：

5.  結果分析判定

5.1  結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現(xiàn)整體傾斜時，根據(jù)分析后圖像調節(jié)Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節(jié))，以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。

5.15.2 結果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤35，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線；

可疑：檢測通道 35<Ct 值≤38，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38， 且曲線有明顯的增長曲線，判定為陽性，否則為陰性；

陰性：樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

6.  質控標準

陰性質控品：Ct>38 或無 Ct 值顯示；

陽性質控品：擴增曲線有明顯指數(shù)生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

7.  檢測方法的局限性

? 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；

? 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結果；

? 陽性對照、擴增產物泄漏，會導致假陽性結果；

? 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；

? 不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；

? 試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定   量檢測不準確的結果；

? 本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】

? 所有操作嚴格按照說明書進行；

? 試劑盒內各種組分使用前應自然融化，混勻并短暫離心；

? 反應液應避光保存；

? 反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服；

? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行，以免交叉污染；

? 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

? 試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通   則》進行處理。

【參考文獻】

[1]  Abdul-Careem M F, Read L R, Parvizi P, et al. Marek's disease virus induced expression of cytokine gene in feather of genetically defined chickens [J]. Dev Comp Immunol, 2009, 33(4): 618-623.

[2]  Davison A J, Eberle R, Ehlers B, et al. The order herpes virales [J]. Arch Virol, 2009(154):171-177.