馬梨形蟲病（Piroplasmosis）PCR試劑盒

產品名稱：馬梨形蟲?。≒iroplasmosis）PCR試劑盒

英文名稱：Diagnostic Kit for Piroplasmosis DNA(Real-Time PCR Method)

馬梨形蟲病是由馬泰勒蟲和駑巴貝斯蟲寄生于馬屬動物（馬、驢、騾和斑馬）的紅細胞內所引起的蜱傳性血液原蟲病。本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術，對馬泰勒蟲 18S 基因和駑巴貝斯蟲 BC48 基因分別設計一對特異性引物和一條特異性探針，用熒光 PCR 技術對馬梨形蟲的核酸進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

【試劑組成】

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次，有效期 9 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

病死或撲殺動物的淋巴結或脾臟 2g；待檢活動物，抽取全血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸， 嚴禁反復凍融。

【使用方法】

1.  樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1  樣本前處理

組織樣品：每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術/剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；咽/拭子樣品直接取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2  核酸提取

推薦采用本公司生產的核酸提取/或純化試劑（磁珠法或離心柱法）進行核酸提取，請按照試劑說明書進行操作。

2.  試劑配制（試劑準備區(qū)）

根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照；樣品每滿

10 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：

將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中，21uL/管。

3.  加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻， 短暫離心。

4.  PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）

4.1  將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內；

4.2  設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25μL；

熒光通道選擇： 檢測通道（Reporter Dye） FAM、VIC， 淬滅通道（Quencher Dye）NONE，請勿選擇 ROX

參比熒光。

4.3  推薦循環(huán)參數(shù)設置：

5.  結果分析判定

5.1  結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現(xiàn)整體傾斜時，根據(jù)分析后圖像調節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節(jié))，以及 Threshold 的Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。

5.2  結果判斷

FAM 通道為馬泰勒蟲檢測結果，VIC 通道為駑巴貝斯蟲檢測結果。陽性：檢測通道 Ct 值≤35，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線；

可疑：檢測通道 35<Ct 值≤38，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38，且曲線有明顯的增長曲線， 判定為陽性，否則為陰性；

陰性：樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

6.  質控標準

陰性質控品：Ct>38 或無 Ct 值顯示；

陽性質控品：擴增曲線有明顯指數(shù)生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

7.  檢測方法的局限性

1. 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；

2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結果；

3. 陽性對照、擴增產物泄漏，會導致假陽性結果；

4. 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；

5. 不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；

6. 試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結果；

7. 本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】

1. 所有操作嚴格按照說明書進行；

2. 試劑盒內各種組分使用前應自然融化，wan全混勻并短暫離心；

3. 反應液應避光保存；

4. 反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服；

6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行，以免交叉污染；

7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

8. 試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。